研究者総覧

奈良 久美 (ナラ クミ)

  • 研究院自然科学系生物科学領域 准教授
メールアドレス:
kumisncc.nara-wu.ac.jp
Last Updated :2021/07/07

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学位

  • 博士(理学), 東北大学

研究キーワード

  • 環境応答、光形態形成、水輸送、アクアポリン、NMRイメージング(MRI)、光による根毛形成促進、pre-mRNAスプライシング 

研究分野

  • ライフサイエンス, 植物分子、生理科学

経歴

  • 2012年04月 奈良女子大学研究院自然科学系・准教授
  • 2007年04月 - 2012年03月 奈良女子大学理学部・准教授
  • 2005年10月 - 2007年03月 奈良女子大学理学部・助教授
  • 1999年04月 - 2005年09月 独立行政法人理化学研究所・研究員

学歴

  • - 1997年 東北大学 理学研究科 生物学専攻
  • - 1992年 東北大学 理学部 生物学科

委員歴

  • 2020年 日本植物生理学会 国際委員 society

    学協会

  • 2009年 - 2010年 日本植物生理学会 会計幹事 society

    学協会

  • 2015年12月 奈良県くらし創造部 景観・自然環境課 奈良県自然環境保全審議会委員 autonomy

    自治体

  • 2014年10月 奈良県農林部農村振興課 奈良県農業農村整備環境配慮検討委員会 autonomy

    自治体

  • 2020年 - 2021年 日本植物生理学会 国際委員

  • 2015年12月01日 - 2021年12月31日 奈良県くらし創造部 景観・自然環境課 奈良県自然環境保全審議会委員

  • 2014年10月01日 - 2021年10月31日 奈良県農林部農村振興課 奈良県農業農村整備環境配慮検討委員会

受賞

  • 第16回国際植物生長物質会議Rising Sun Award, Kumi Sato-Nara, 1998年

論文

  • Inhibition of Pre-mRNA Splicing Promotes Root Hair Development in Arabidopsis thaliana

    Miku Ishizawa; Kayo Hashimoto; Misato Ohtani; Ryosuke Sano; Yukio Kurihara; Hiroaki Kusano; Taku Demura; Minami Matsui; Kumi Sato-Nara

    2019年08月, Plant & Cell Physiology

    研究論文(学術雑誌)

  • Functionally Diversified Members of the MIR165/6 Gene Family Regulate Ovule Morphogenesis in Arabidopsis thaliana

    Kayo Hashimoto; Shunsuke Miyashima; Kumi Sato-Nara; Toshihiro Yamada; Keiji Nakajima

    The ovules of flowering plants consist of a central embryo sac and surrounding layers of the inner and outer integument. As these structural units eventually give rise to the embryo/endosperm and seed coat, respectively, a precisely organized ovule structure is essential for successful fertilization and seed production. In Arabidopsis thaliana, correct ovule patterning depends on the restricted expression of the CLASS III HOMEODOMAIN LEUCINE ZIPPER (HD-ZIP III) gene PHABULOSA (PHB) in the apical region of the incipient inner integument, which in turn is regulated via post-transcriptional suppression by miR165 and miR166 (miR165/6) derived from multiple MIR165/6 genes. While a common subset of MIR165/6 genes regulate PHB expression in the root meristem, leaf primordium and embryo, it is unknown whether the same MIR165/6 subset also regulate PHB expression during ovule development. Furthermore, it is unclear where in the ovule primordia miR165/6 are produced. Here, we show that a distinct set of MIR165/6 genes that are highly expressed in the small regions of early ovule primordia restrict the PHB expression domain to promote integument formation. MIR165/6 genes that function in ovule development are phylogenetically distinct from those acting in roots and leaf primordia. Taken together, our data suggest that members of the MIR165/6 gene family are diversified in their expression capacity to establish elaborate PHB expression patterns depending on the developmental context, thereby allowing HD-ZIP III transcription factors to regulate multiple aspects of plant development., 2018年05月01日, Plant and Cell Physiology, 59 (5), 1017 - 1026, doi

    研究論文(学術雑誌)

  • Accumulation of TIP2;2 aquaporin during dark adaptation is partially phyA dependent in roots of Arabidopsis seedlings

    Yumi Uenishi; Yukari Nakabayashi; Ayako Tsuchihira; Mari Takusagawa; Kayo Hashimoto; Masayoshi Maeshima; Kumi Sato-Nara

    Light regulates the expression and function of aquaporins, which are involved in water and solute transport. In Arabidopsis thaliana, mRNA levels of one of the aquaporin genes, TIP2 2, increase during dark adaptation and decrease under far-red light illumination, but the effects of light at the protein level and on the mechanism of light regulation remain unknown. Numerous studies have described the light regulation of aquaporin genes, but none have identified the regulatory mechanisms behind this regulation via specific photoreceptor signaling. In this paper, we focus on the role of phytochrome A (phyA) signaling in the regulation of the TIP2 2 protein. We generated Arabidopsis transgenic plants expressing a TIP2 2-GFP fusion protein driven by its own promoter, and showed several differences in TIP2 2 behavior between wild type and the phyA mutant. Fluorescence of TIP2 2-GFP protein in the endodermis of roots in the wild-type seedlings increased during dark adaptation, but not in the phyA mutant. The amount of the TIP2 2-GFP protein in wild-type seedlings decreased rapidly under far-red light illumination, and a delay in reduction of TIP2 2-GFP was observed in the phyA mutant. Our results imply that phyA, cooperating with other photoreceptors, modulates the level of TIP2 2 in Arabidopsis roots., 2014年03月01日, Plants, 3 (1), 177 - 195, doi

    研究論文(学術雑誌)

  • Diurnal changes in shoot water dynamics are synchronized with hypocotyl elongation in Arabidopsis thaliana

    Haruki Ishikawa; Kumi Sato-Nara; Tomoyuki Takase; Hitoshi Suzuki

    We recently demonstrated the circadian clock modulated water dynamics in the roots of a small model plant, Arabidopsis thaliana, by the Nuclear Magnetic Resonance (NMR) microimaging technique. Our developed technique was able to visualize the water distribution that depended on differences in the 1H signal among region in the shoot, such as the shoot apex, the hypocotyl and the root shoot junction. Water content in the shoot increased during periods of light in comparison with dark periods, and continued through the early stage of seedling growth until the dark period. When the water content changed, elongation and/or movement occurred in the hypocotyl, and these events were synchronized. The water dynamics of the shoot also displayed an opposite phase with the root water dynamics. © 2013 Landes Bioscience., 2013年03月, Plant Signaling and Behavior, 8 (3), e23250.2, doi;pubmed

    研究論文(学術雑誌)

  • A Comprehensive Expression Analysis of the Arabidopsis MICRORNA165/6 Gene Family during Embryogenesis Reveals a Conserved Role in Meristem Specification and a Non-Cell-Autonomous Function

    Shunsuke Miyashima; Minami Honda; Kayo Hashimoto; Kiyoshi Tatematsu; Takashi Hashimoto; Kumi Sato-Nara; Kiyotaka Okada; Keiji Nakajima

    One of the most fundamental events in plant ontogeny is the specification of the shoot and root apical meristem (SAM and RAM) in embryogenesis. In Arabidopsis, the restricted expression of class III homeodomain leucine zipper (HD-ZIP III) transcription factors (TFs) at the central-apical domain of early embryos is required for the correct specification of the SAM and RAM. Because the expression of HD-ZIP III TFs is suppressed by microRNA165/166 (miR165/6), elucidation of the sites of miR165/6 production and their activity range is a key to understanding the molecular basis of SAM and RAM specification in embryogenesis. Here, we present a comprehensive reporter analysis of all nine Arabidopsis MICRORNA165/166 (MIR165/6) genes during embryogenesis. We show that five MIR165/6 genes are transcribed in a largely conserved pattern in embryos, with their expression being preferentially focused at the basal-peripheral region of embryos. Our analysis also indicated that MIR165/6 transcription does not depend on SCARECROW (SCR) function in early embryos, in contrast to its requirement in post-embryonic roots. Furthermore, by observing the expression pattern of the miR-resistant PHBmu-GFP (green fluorescent protein) reporter, in either the presence or absence of the MIR165Amu transgene, which targets PHBmu-GFP, we obtained data that indicate a non-cell-autonomous function for miR165 in early embryos. These results suggest that miR165, and possibly miR166 as well, has the capacity to act as a positional cue from the basal-peripheral region of early embryos, and remotely controls SAM and RAM specification with their non-cell-autonomous function., 2013年03月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 54 (3), 375 - 384, doi;web_of_science

    研究論文(学術雑誌)

  • The Circadian Clock Modulates Water Dynamics and Aquaporin Expression in Arabidopsis Roots

    Tomoyuki Takase; Haruki Ishikawa; Haruko Murakami; Jun Kikuchi; Kumi Sato-Nara; Hitoshi Suzuki

    We have developed a plant growth system to analyze water dynamics in the roots of a small model plant, Arabidopsis thaliana, by nuclear magnetic resonance (NMR) microscopic imaging. Using the two-dimensional slice technique, we obtained a series of images with high signal-to-noise ratio indicating the water distribution in the root. To demonstrate light regulation of water transport in the root and involvement of aquaporin gene expression, we visualized the distribution of water in Arabidopsis roots under various light conditions and compared the data with the expression profiles of two aquaporin genes. (1)H-NMR imaging revealed that water content in Arabidopsis roots is lower in the light than in the dark. This diurnal variation in water content was clearly observed in the basal zone of the root. In addition, an autonomous rhythm of water dynamics was observed under continuous light (LL) and darkness (DD). However, the circadian oscillation in water dynamics was obscured in the early-flowering 3 (elf3) mutant under LL. The expression of both the aquaporin genes, AtPIP1;2 and AtPIP2;1, oscillated with the circadian rhythm under LL conditions in wild-type seedlings, but not in the elf3 mutant. These results demonstrate the advantages of our technique for monitoring water dynamics in roots of living Arabidopsis seedlings, and suggest that the circadian clock modulates water dynamics and aquaporin expression., 2011年02月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 52 (2), 373 - 383, doi;web_of_science

    研究論文(学術雑誌)

  • Identification of genes regulated by dark adaptation and far-red light illumination in roots of Arabidopsis thaliana

    K Sato-Nara; A Nagasaka; H Yamashita; J Ishida; A Enju; M Seki; K Shinozaki; H Suzuki

    Roots in the soil are illuminated by far-red (FR) light passed through plant tissues in the daytime, and are in complete darkness at night. To evaluate whether gene expression of roots is affected by a dark-FR light cycle, gene expression profiles were analysed for dark-adapted versus light-grown plants and for FR light-illuminated versus dark-adapted plants using the RIKEN Arabidopsis full-length cDNA microarray (containing approximately 7000 independent, full-length cDNA groups). Among candidate dark- and FR-regulated genes, several were further analysed. Eleven dark-inducible and five dark-repressed genes were characterized. Almost all the dark-inducible and -repressed genes were oppositely regulated by FR light illumination. The functions of dark- and FR-responsive genes and the significance of FR light-regulated gene expression in roots under ground are discussed., 2004年11月, PLANT CELL AND ENVIRONMENT, 27 (11), 1387 - 1394, web_of_science

    研究論文(学術雑誌)

  • Expression of photosynthesis-related genes and their regulation by light during somatic embryogenesis in Daucus carota

    K Sato-Nara; T Demura; H Fukuda

    To clarify the spatial and temporal pattern of gene expression for photosynthesis-associated proteins during somatic embryogenesis in Daucus carota L., the localization of mRNAs for three genes, rbcL, Lhcb and por, was examined in dark-grown and light-irradiated somatic embryos by in situ hybridization. The three mRNAs were expressed in common in the mesophyll precursor cells of light-irradiated embryos at the late torpedo and plantlet stages, but characteristic expression patterns of each photosynthesis-related gene were also observed. Expression of rbcL mRNA first occurred throughout the embryo but gradually became localized in the mesophyll precursor cells and cortex during early embryogenesis. Localization of Lhcb mRNA in the mesophyll precursor cells and shoot apical meristem became clear in the early torpedo stage. Expression of Lhcb mRNA was not affected by light during early embryogenesis, but could be induced by light in the torpedo stage, suggesting that light-inducible expression of Lhcb mRNA arises within the torpedo stage. At the late torpedo stage, clear localization of por mRNA started in mesophyll precursor cells of the cotyledon in light-irradiated embryos. Greening potency of the embryo also appeared first at this stage. Therefore, greening and initial differentiation of photosynthetic tissues during somatic embryogenesis seem to be associated with coordinated expression of mRNA for rbcL, Lhcb and por in late torpedo-shaped embryos., 2004年05月, PLANTA, 219 (1), 23 - 31, doi;web_of_science

    研究論文(学術雑誌)

  • Sugar-induced adventitious roots in Arabidopsis seedlings

    F Takahashi; K Sato-Nara; K Kobayashi; M Suzuki; H Suzuki

    The effects of sugars on root growth and on development of adventitious roots were analyzed in Arabidopsis thaliana. Seeds were sown on agar plates containing 0.0-5.0% sugars and placed vertically in darkness (DD) or under long day (LD,16 h : 8 h) conditions, so that the seedlings were constantly attached to the agar medium. In the sucrose-supplemented medium, seedlings showed sustained growth in both DD and LD. However, only dark-grown seedlings developed adventitious roots from the elongated hypocotyl. The adventitious roots began to develop 5 days after imbibition and increased in number until day 11. They could, however, be initiated at any position along the hypocotyl, near the cotyledon or the primary root. They were initiated in the pericycle in the same manner as ordinary lateral roots. Sucrose, glucose and fructose greatly stimulated the induction of adventitious roots, but mannose or sorbitol did not. Sucrose at concentrations of 0.5-2.0% was most effective in inducing adventitious roots, although 5.0% sucrose suppressed induction. Direct contact of the hypocotyl with the sugar-supplemented agar medium was indispensable for the induction of adventitious roots., 2003年04月, JOURNAL OF PLANT RESEARCH, 116 (2), 83 - 91, doi;web_of_science

    研究論文(学術雑誌)

  • Detection of ethylene receptor protein Cm-ERS1 during fruit development in melon (Cucumis melo L.)

    H Takahashi; T Kobayashi; K Sato-Nara; K Tomita; H Ezura

    Antibodies against melon ethylene receptor, Cm-ERS1 was prepared. Cm-ERS1 protein formed a disulphide-linked homodimer and it was present in microsomal membranes but not in soluble fractions. Cm-ERS1 protein was present at high levels in melon fruit during early developmental stages. This transition pattern was also observed in another melon cultivar., 2002年03月, JOURNAL OF EXPERIMENTAL BOTANY, 53 (368), 415 - 422, web_of_science

    研究論文(学術雑誌)

  • The rates of deceleration of nuclear and organellar DNA syntheses differ in the progenitor cells of the apical meristems during carrot somatic embryogenesis

    K Sato-Nara; H Fukuda

    The synthesis of DNA in nuclei and organellar nucleoids at the various stages of somatic embryogenesis in carrot (Daucus carota L. cv. Kurodagosun) was analyzed using anti-5-bromo-2'-deoxyuridine (BrdU) immunofluorescence microscopy. The active syntheses of both nuclear and organellar DNA started in the cells forming the embryo groper 3 d after the initiation of embryogenesis, but not in cells forming suspensor-like cell aggregates. In the early globular embryo, active DNA syntheses were continuously observed in the whole embryo groper, except for the progenitor cells of the root apical meristem (RAM) and shoot apical meristem (SAM). These were recognized as slowly cycling cells with a non-BrdU-labelled nucleus and strongly BrdU-labelled organellar nucleoids. At the heart- and torpedo-shaped embryo stages, both nuclear and organellar DNA syntheses were inactive in the presumptive RAM and SAM. Thus, slowing down of organellar DNA synthesis is not coupled with, but is later than, that of nuclear DNA synthesis in the progenitor cells of the embryonic RAM and SAM. These findings clearly indicate that the timing of DNA synthesis is similar in the progenitor cells of both the RAM and SAM in the early stages of somatic embryogenesis., 2000年09月, PLANTA, 211 (4), 457 - 466, web_of_science

    研究論文(学術雑誌)

  • Stage- and tissue-specific expression of ethylene receptor homolog genes during fruit development in muskmelon

    K Sato-Nara; K Yuhashi; K Higashi; K Hosoya; M Kubota; H Ezura

    We isolated two muskmelon (Cucumis melo) cDNA homologs of the Arabidopsis ethylene receptor genes ETR1 and ERS1 and designated them Cm-ETR1 (C. melo ETR1; accession no. AF054806) and Cm-ETR1 (C. melo ERS1; accession no. AF037368), respectively. Northern analysis revealed that the level of Cm-ERS1 mRNA in the pericarp increased in parallel with the increase in fruit size and then markedly decreased at the end of enlargement. In fully enlarged fruit the level of Cm-ERS1 mRNA was low in all tissues, whereas that of Cm-ETR1 mRNA was very high in the seeds and placenta. During ripening Cm-ERS1 mRNA increased slightly in the pericarp of fruit before the marked increase of Cm-ETR1 mRNA paralleled climacteric ethylene production. These results indicate that both Cm-ETR1 and Cm-ERS1 play specific roles not only in ripening but also in the early development of melon fruit and that they have distinct roles in particular fruit tissues at particular developmental stages., 1999年05月, PLANT PHYSIOLOGY, 120 (1), 321 - 329, web_of_science

    研究論文(学術雑誌)

  • Ethylene receptors and genetic engineering of ethylene sensitivity in plants

    Kumi Sato-Nara; Ken-Ichi Yuhashi; Hiroshi Ezura

    Ethylene is a gaseous plant hormone which gives cues to various developmental processes and stress responses in plants. Plants regulate their ethylene sensitivity for programmed development and responses to environmental stresses. After the successful isolation of the Arabidopsis ethylene receptor gene ETR1, ethylene receptor genes have been found in various plant species. Characterization of ethylene receptor genes provides clues to understanding how plants regulate their ethylene sensitivity. This knowledge also gives us potential methods for engineering the ethylene sensitivity of plants. Genetically - engineered plants with reduced ethylene sensitivity will be potential resources for improving crop performance. Moreover, those transgenic plants will provide further information to elucidate the mechanism of how plants regulate their ethylene sensitivity. The recent progress in genetic and protein analyses of ethylene receptors is summarized in this review. The possible strategies for altering the ethylene sensitivity of plants using the ethylene receptor genes are also discussed., 1999年, Plant Biotechnology, 16 (5), 321 - 334, doi

    研究論文(学術雑誌)

  • Purification and characterization of a mitochondrial DNA polymerase from cultured tobacco cells

    K Sato; H Fukuda

    The mitochondrial DNA polymerase of tobacco BY-2 cells was purified more than 1,200-fold by column chromatography on DEAE cellulose, phosphocellulose, and Affi-Prep heparin. The enzyme was classified as a gamma-type DNA polymerase, in view of the inhibition of its activity by N-ethylmaleimide and dideoxy TTP, the absence of inhibition by aphidicolin and arabinosyl CTP, the stimulation by KCI, and the ability of the enzyme to utilize poly(A)(dT)(12-18) in the presence of Mn2+ ions. The molecular mass of the native mitochondrial DNA polymerase was estimated to be 70-110 kDa by column chromatography on Superose 12. When DNA polymerase activity was analyzed after sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis, the activity that polymerized DNA was observed as a single band of a protein with a molecular mass of approximately 110 kDa. Therefore, the tobacco mitochondrial DNA polymerase appears to consist of a single subunit of 110 kDa., 1996年10月, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 37 (7), 989 - 995, web_of_science

    研究論文(学術雑誌)

MISC

  • シロイヌナズナを用いた根の水の状態の比較の試み

    長井理香; 福岡美香; 高瀬智敬; 伊達康博; 菊地淳; 石田信昭; 奈良久美

    2014年08月, NMRマイクロイメージング研究会講演要旨集, 18th, 9 - 10, j_global

  • シロイヌナズナの根の水の状態や輸送に異常のある変異体の探索に向けて

    奈良久美; 長井理香; 丹後真奈美; 伊達康博; 石川春樹; 高瀬智之; 菊地淳

    2012年09月14日, 日本植物学会大会研究発表記録, 76th, 215, j_global

  • 概日時計はシロイヌナズナの根の水分量を調節する

    高瀬智敬; 石川春樹; 村上晴子; 菊地淳; 奈良久美; 鈴木均

    2011年11月30日, 時間生物学, 17 (2), 129, j_global

  • Far-red light illumination to shoots of Arabidopsis plants alters gene expression in roots via two distinct pathways

    K Sato-Nara; A Nagasaka; H Yamashita; H Ishikawa; H Suzuki

    OXFORD UNIV PRESS, 2006年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 47, S123 - S123, web_of_science

    研究発表ペーパー・要旨(国際会議)

  • Water distribution in the root of Arabidopsis thaliana and its time dependent change induced by far-red (FR) light

    H Ishikawa; K Sato-Nara; H Suzuki

    OXFORD UNIV PRESS, 2005年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 46, S72 - S72, web_of_science

    研究発表ペーパー・要旨(国際会議)

  • Far-red light illumination to shoots of Arabidopsis plants causes the repression of an aquaporin gene in roots

    K Sato-Nara; T Nagata; H Yamashita; H Ishikawa; M Maeshima; H Suzuki

    OXFORD UNIV PRESS, 2005年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 46, S72 - S72, web_of_science

    研究発表ペーパー・要旨(国際会議)

  • Far-red light responses of water-channel gene expression in the root of Arabidopsis thaliana

    A Nagasaka; K Sato-Nara; H Ishikawa; H Yamashita; Q Sun; H Suzuki

    OXFORD UNIV PRESS, 2004年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 45, S45 - S45, web_of_science

    研究発表ペーパー・要旨(国際会議)

  • Monitoring gene expression pattern in roots under dark adaptation and far-red light illumination using RIKEN Arabidopsis full-length cDNA microarray

    K Sato-Nara; H Yamashita; Q Sun; M Seki; K Shinozaki; H Suzuki

    OXFORD UNIV PRESS, 2003年, PLANT AND CELL PHYSIOLOGY, 44, S150 - S150, web_of_science

    研究発表ペーパー・要旨(国際会議)

講演・口頭発表等

  • シロイヌナズナの液胞膜型アクアポリンTIP2;2の機能解析

    奈良久美

    第62回日本植物生理学会年会, 2021年03月14日, 2021年03月14日

    ポスター発表

  • シロイヌナズナの光感受性根毛発達変異体lrh1におけるゲノムワイドなpre-mRNAスプライシング異常

    石澤 未来; 橋本 佳世; 大谷 美沙都; 佐野 亮輔; 栗原 志夫; 草野 博彰; 出村 拓; 松井 南; 奈良 久美

    第61回日本植物生理学会年会, 2020年03月20日, 2020年03月19日, 2020年03月19日, rm:research_project_id

  • 時計因子ELF3は胚軸における水輸送調節にどのように関連しているのか?

    藤田 知美; 奥村 綾子; 土平 絢子; 前島 正義; 且原 真木; 奈良 久美

    日本植物学会 第83回大会, 2019年09月17日, false

  • pre-mRNAスプライシングの阻害によるシロイヌナズナの根毛形成の促進

    石澤未来; 橋本佳世; 大谷美沙都; 草野博彰; 松井南; 奈良久美

    日本植物学会 第83回大会, 2019年09月17日, false

  • シロイヌナズナ液胞膜型アクアポリンAtTIP2;2の過酸化水素透過性の検討

    山成由佳子; 中原由揮; 且原真木; 奈良久美

    日本植物学会 第83回大会, 2019年09月16日, false

  • シロイヌナズナの光によるRNAスプライシングの調節と根毛形成促進との関連性の検討

    石澤 未来; 橋本 佳世; 大谷 美沙都; 松井 南; 奈良 久美

    日本植物学会 第82回大会, 2018年09月, 日本植物学会, 広島

  • シロイヌナズナの根と根細胞の水透過性測定

    藤田知美; 奥村綾子; 且原真木; 奈良久美

    日本植物学会 第82回大会, 2018年09月, 日本植物学会, 広島

  • シロイヌナズナの液胞膜型アクアポリンAtTIP2;2とAtTIP2;3の水透過性

    山成由佳子; 中原由揮; 且原真木; 奈良久美

    日本植物学会 第82回大会, 2018年09月, 日本植物学会, 広島

  • シロイヌナズナのアクアポリンTIP2;2の欠損による根の細胞伸長促進と塩ストレス耐性の向上

    加藤 未来; 山成 由佳子; 奈良 久美

    第59回日本植物生理学会年会, 2018年03月, 札幌市, false

  • シロイヌナズナの原形質膜アクアポリン遺伝子PIP2;3の高温誘導を増大させる光の波長の検討

    吉川美保; 菰田雅子; 土平絢子; 前島正義; 奈良久美

    日本植物学会 第81回大会, 2017年09月, 日本植物学会, 東京理科大学 野田キャンパス

  • シロイヌナズナのアクアポリンtip2;2及びtip2;3変異体のストレス応答の解析

    加藤未来; 奈良久美

    日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本植物学会, 沖縄

  • シロイヌナズナ概日時計変異体elf3の根の水透過性

    奥村綾子; 且原真木; 金子智之; 奈良久美

    日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本植物学会, 沖縄

  • シロイヌナズナの原形質膜アクアポリンPIP2;1遺伝子の光による発現調節

    槇野智穂; 土平絢子; 丹後真奈実; 前島正義; 奈良久美

    日本植物学会 第80回大会, 2016年09月, 日本植物学会, 沖縄

  • Growth analysis of aquaporin mutants deficient in tonoplast intrinsic proteins TIP2;2 and TIP2;3 in Arabidopsis thaliana

    奈良久美

    NWU-UL Mini-symposium on Bioscience, 2016年03月, Nara, true

  • シロイヌナズナのアクアポリンTIP2;2及びTIP2;3の欠損による成長への影響

    加藤未来; 奈良久美

    日本植物学会 第79回大会, 2015年09月, 日本植物学会, 新潟

  • シロイヌナズナの光による根毛形成促進突然変異体lrh1の単離と解析

    山下 慶子; 草野 博彰; 橋本 佳世; 中澤 美紀; 松井 南; 奈良 久美

    第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, false

  • シロイヌナズナの根で遠赤色光により誘導されるPR1様遺伝子FPLの発現解析

    山口潤子; 吉本(宮崎)愛; 奈良久美

    第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 東京都世田谷区(東京農業大学), false

  • シロイヌナズナ概日時計変異体を用いた根の水透過性とアクアポリンPIP2sのリン酸化の解析

    奥村 綾子; 且原 真木; 金子 智之; 奈良 久美

    第56回日本植物生理学会年会, 2015年03月, 東京都世田谷区(東京農業大学), false

  • シロイヌナズナの根の細胞サイズとMRIによる水の状態の解析

    長井理香; 福岡美香; 高瀬智敬; 石田信昭; 奈良久美

    日本植物学会第78回大会, 2014年09月, 日本植物学会, 神奈川県 明治大学生田キャンパス, false

  • シロイヌナズナを用いた根の水の状態の比較の試み

    長井理香; 福岡美香; 高瀬智敬; 伊達康博; 菊地淳; 石田信昭; 奈良久美

    第18回NMRマイクロイメージング研究会, 2014年08月, 石川県金沢市, false

  • シロイヌナズナ実生のシュートにおけるアクアポリン遺伝子PIP2;1の発現と根の水動態との関連性の検討

    長井理香; 土平絢子; 前島正義; 奈良久美

    第55回日本植物生理学会年会, 2014年03月, 日本植物生理学会, 富山, false

  • シロイヌナズナの根の細胞サイズの光と糖による調節

    長井理香; 丹後真奈実; 奈良久美

    日本植物学会 第77回大会, 2013年09月, 日本植物学会, 北海道札幌市, false

  • 花器官において発現するMIR165/166遺伝子の探索

    橋本佳世; 中島敬二; 中澤美紀; 松井南; 奈良久美

    日本植物学会 第76回大会, 2012年09月, 日本植物学会, 兵庫県姫路市, false

  • シロイヌナズナの根の水の状態や輸送に異常のある変異体の探索に向けて

    奈良久美; 長井理香; 丹後真奈実; 伊達康博; 石川春樹; 高瀬智之; 菊地淳

    日本植物学会 第76回大会, 2012年09月, 日本植物学会, 兵庫県立大学姫路書写キャンパス(兵庫県姫路市), false

  • Characterization of MIR166c and MIR166d overexpression mutant in Arabidopsis thaliana

    奈良久美

    NWU-UL Mini-symposium on Bioscience, 2012年03月, Nara, true

  • シロイヌナズナphyA変異体の根ではアクアポリンが蓄積している

    中林由香里; 岡本彩花; 橋本佳世; 奈良久美

    第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, false

  • シロイヌナズナMIR166d過剰発現は雌蕊の発達に影響を及ぼす

    橋本佳世; 中澤美紀; 松井 南; 奈良久美

    第53回日本植物生理学会年会, 2012年03月, 日本植物生理学会, 京都, false

  • シロイヌナズナMIR166cおよびMIR166d過剰発現系統における形態異常の原因を探る

    橋本佳世; 中澤美紀; 松井 南; 奈良久美

    日本植物学会第75回大会(東京), 2011年09月, false

  • シロイヌナズナの概日時計突然変異体を利用したアクアポリンの発現制御機構の研究

    村上晴子; 前島正義; 奈良久美

    第3回植物アクアポリン研究検討会, 2011年06月, false

  • フィトクロムAの欠損によるアクアポリンの量や局在への影響を探るための試み

    岡本彩花; 中林由香里; 村上晴子; 橋本佳世; 土平絢子; 前島正義; 奈良久美

    第3回植物アクアポリン研究検討会, 2011年06月, false

  • シロイヌナズナMIR166cおよびMIR166d過剰発現体の解析

    橋本佳世; 中澤美紀; 松井 南; 奈良久美

    第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, false

  • シロイヌナズナのEARLY FLOWERING 3 (ELF3)の欠損はアクアポリンの概日調節に影響を与えるのか?

    村上晴子; 前島正義; 奈良久美

    第52回日本植物生理学会年会, 2011年03月, false

  • シロイヌナズナのアクアポリン遺伝子の概日リズムによる発現調節

    村上晴子; 石川春樹; 高瀬智敬; 鈴木均; 菊池淳; 奈良久美

    日本植物学会第74回大会(中部大学), 2010年09月, false

  • 花茎帯化及び不稔形質を呈するシロイヌナズナ突然変異系統の単離と解析

    橋本 佳世; 中澤 美紀; 松井 南; 坂口 修一; 奈良 久美

    日本植物学会第74回大会(中部大学), 2010年09月, false

  • Involvement of phytochrome A in regulation of water dynamics and aquaporin expression in Arabidopsis roots

    奈良久美; Haruki Ishikawa; Yumi Uenishi; Tomoyuki Takase; Atsushi Nagasaka; Ayako Tsuchihira; Masayoshi Maeshima; Jun Kikuchi; Hitoshi Suzuki; Kumi Sato-Nara

    21st International Conference on Arabidpsis Research, 2010年06月, true

  • シロイヌナズナの液胞膜アクアポリンTIP2;2の組織局在と暗順応への応答

    植西由美; 土平絢子; 前島正義; 奈良久美

    第51回日本植物生理学会年会(熊本), 2010年03月, false

  • Involvement of phytochrome A in regulation of water dynamics and aquaporin expression in Arabidopsis roots

    奈良久美; Yumi Uenishi; Haruki Ishikawa; Tomoyuki Takase; Atsushi Nagasaka; Ayako Tsuchihira; Masayoshi Maeshima; Hitoshi Suzuki; Kumi Sato-Nara

    Memorial Symposium for the 25th International Prize for Biology Celebrating Dr. Winslow R. Briggs "Biology of Sensing", 2009年12月, true

  • 遠赤色光応答性PR1様遺伝子FPLはエチレンに依存し根の組織特異的に発現する

    大西沙季; 奈良久美

    2009年度日本植物学会近畿支部会, 2009年11月, false

  • シロイヌナズナの遠赤色光誘導遺伝子FPLのエチレン応答

    大西沙季; 奈良久美

    第50回植物生理学会年会(名古屋), 2009年03月, false

  • シロイヌナズナの根のアクアポリンの光応答:フィトクロムA突然変異体を用いた解析

    植西由美; 石川春樹; 土平絢子; 前島正義; 鈴木均; 奈良久美

    日本植物学会第72会大会(高知), 2008年09月, false

  • 光によって根毛形成が促進されるシロイヌナズナ突然変異体の単離と解析

    奈良久美; 小林和貴; 正岡詩織; 小林淳子; 中澤美紀; 松井南; 鈴木均

    第49回日本植物生理学会年会, 2008年03月, false

  • Effects of far-red light on water distribution and aquaporin gene expression in the root of Arabidopsis thaliana

    奈良久美; Haruki Ishikawa; Kumi Sato-Nara; Ayako Tsuchihira; Masayoshi Maeshima; Atsushi Nagasaka; Hitoshi Suzuki

    The 5th International Conference of Aquaporin, 2007年07月, true

  • Involvement of two distinct signaling pathways induced by far-red light with TIP2;2 gene regulation in roots of Arabidopsis

    奈良久美; Kumi Sato-Nara; Atsushi Nagasaka; Hizuru Yamashita; Haruki Ishikawa; Hitoshi Suzuki

    The 5th International Conference of Aquaporin, 2007年07月, true

  • Characterizatoin of a light-promoted root-hair development mutant, lrh1, of Arabidopsis.

    奈良久美; Kumi Sato-Nara; Kazutaka Kobayashi; Junko Kobayashi; Miki Nakazawa; Minami Matsui; Hitoshi Suzuki

    Nara Women's University International Symposium-Light Regulation of Plant Growth and Development., 2007年01月, The assistance office of woman researchers, Nara, true

  • シロイヌナズナTIP2;2遺伝子の遠赤色光による発現制御機構の解析

    奈良久美; 石川春樹; 鈴木均

    第2回アクアポリン研究討論会, 2006年03月, false

  • シュートへの遠赤色光照射による根の遺伝子発現調節機構の解析

    奈良久美; 永坂厚; 山下日鶴; 石川春樹; 鈴木均

    第47回日本植物生理学会年会, 2006年03月, false

  • シュートへの遠赤色光照射による根のアクアポリン遺伝子による発現抑制

    奈良久美; 永田俊文; 山下日鶴; 石川春樹; 前島正義; 鈴木均

    第46回日本植物生理学会年会, 2005年03月, false

  • 光は根の水輸送を調節しているか?

    奈良久美; 高瀬智敬; 山下日鶴; 石川春樹; 永坂厚; 永田俊文; 鈴木均

    日本植物学会東北支部第17回大会, 2004年12月, false

  • シロイヌナズナの液胞膜型アクアポリンTIP2;2の機能解析

    山成由佳子; 中原由揮; 藤本緋菜; 本廣夕佳; 桑形恒男; 半場祐子; 且原真木; 奈良久美

    第62回日本植物生理学会年会, 2021年03月16日, 2021年03月14日, 2021年03月14日, rm:research_project_id;rm:research_project_id;rm:research_project_id

担当経験のある科目(授業)

  • 植物環境応答学セミナーII (奈良女子大学)

  • 化学生物環境学特別研究IV (奈良女子大学)

  • 植物環境応答学演習IV (奈良女子大学)

  • 生物環境科学基礎演習II (奈良女子大学)

  • 化学生物環境学特別研究III (奈良女子大学)

  • 植物環境応答学演習III (奈良女子大学)

  • 植物環境応答学セミナーI (奈良女子大学)

  • 専門職論(理学部) (奈良女子大学)

  • 植物環境応答学演習II (奈良女子大学)

  • 卒業研究II(環境科学) (奈良女子大学)

  • 化学生物環境学特別研究II (奈良女子大学)

  • 現代社会と職業 (奈良女子大学)

  • 植物環境応答学演習I (奈良女子大学)

  • 卒業研究I(環境科学) (奈良女子大学)

  • 植物環境応答学特論 (奈良女子大学)

  • 化学生物環境学特別研究I (奈良女子大学)

  • 卒業研究II(生物科学) (奈良女子大学)

  • 生物環境科学展開実習II (奈良女子大学)

  • 実践生物環境科学演習II (奈良女子大学)

  • 個体・集団生物学特論5 (奈良女子大学)

  • 生物学実験(C) (奈良女子大学)

  • 生物学実験(B) (奈良女子大学)

  • 生物学実験(A) (奈良女子大学)

  • 個体・集団生物学特論1 (奈良女子大学)

  • 卒業研究I(生物科学) (奈良女子大学)

  • 生物環境科学特論1 (奈良女子大学)

  • 環境生物学実習 (奈良女子大学)

  • 卒業研究IV (奈良女子大学)

  • 環境科学概論 (奈良女子大学)

  • 生物環境科学基礎演習IIA (奈良女子大学)

  • 生物環境科学基礎実習IIB (奈良女子大学)

  • 生物環境科学基礎演習IIB (奈良女子大学)

  • 生物環境科学基礎実習IIA (奈良女子大学)

  • 化学生命環境学入門 (奈良女子大学)

  • 分子細胞工学 (奈良女子大学)

  • 展開実習II (奈良女子大学)

  • 生物科学演習II (奈良女子大学)

  • 基礎遺伝学 (奈良女子大学)

  • 生物科学特論4 (奈良女子大学)

  • 生物科学特論1 (奈良女子大学)

  • サイエンスオープンラボI (奈良女子大学)

  • 生物科学英語III (奈良女子大学)

  • 生物学特別講義IIA (奈良女子大学)

  • 植物分子環境応答論演習 (奈良女子大学)

  • 植物分子環境応答論 (奈良女子大学)

  • 生物科学方法論 (奈良女子大学)

  • 生物科学特別研究IV (奈良女子大学)

  • 生物科学特別研究II (奈良女子大学)

  • 基礎科学英語 (奈良女子大学)

  • 環境生理学セミナーIV (奈良女子大学)

  • 環境生理学セミナーII (奈良女子大学)

  • 卒業研究II (奈良女子大学)

  • 展開実習 (奈良女子大学)

  • 生物科学特別研究III (奈良女子大学)

  • 生物科学特別研究I (奈良女子大学)

  • 卒業研究I (奈良女子大学)

  • 生物学特別講義V (奈良女子大学)

  • 基礎生物学実習I (奈良女子大学)

  • 生物学序説 (奈良女子大学)

  • 生物科学英語II (奈良女子大学)

  • 生物学実験II (奈良女子大学)

  • 環境生理学実習 (奈良女子大学)

  • 植物生理学実習 (奈良女子大学)

  • 植物生理学 (奈良女子大学)

  • 環境生理学特論II (奈良女子大学)

  • 環境生理学・植物生理学 (奈良女子大学)

所属学協会

  • 日本植物学会

  • 日本植物生理学会

Works(作品等)

  • 遠赤色光EEFL照明によるシロイヌナズナの栽培試験研究

    2010年10月 - 2011年03月

  • Cultivation test of Arabidopsis thaliana under far-red light illumination using an EEFL system

    2010年10月 - 2011年03月



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